American grasshopper – Schistocerca americana (Drury)

nome comune: American grasshopperscientific nome: Schistocerca americana (Drury) (Insecta: Orthoptera: Acrididae)

American cavalletta, Schistocerca americana (Drury), di tanto in tanto provoca gravi danni alle colture e piante ornamentali, e la loro grande abbondanza, può essere un fastidio. I campi possono essere invasi quotidianamente dalle cavallette adulte, che spesso posano di notte negli alberi e negli arbusti vicini. Le ninfe dalle ali corte sono naturalmente meno mobili, e normalmente risiedono all’interno di campi soleggiati, poiché le cavallette evitano l’ombra. Le loro uova sono depositate nel terreno.

Femmina adulta cavalletta americana, Schistocerca americana (Drury).

Figura 1. Femmina adulta cavalletta americana, Schistocerca americana (Drury). Fotografia di Tom Friedel.

Distribuzione (Torna in alto)

In Nord America, la cavalletta americana si trova ad est delle Grandi Pianure, in tutto il sud-est e a nord nei pressi dell’Iowa e della Pennsylvania. È comune in tutta la Florida, e si trova anche in Messico e Bahamas.

Descrizione (Torna in alto)

Adulti: Il colore generale cambia gradualmente da un marrone-rosato o bruno-rossastro a più di una tonalità bruno-giallastra man mano che la cavalletta raggiunge la maturità sessuale. Gli adulti portano ali completamente sviluppate con grandi macchie marrone scuro su uno sfondo più chiaro. Gli adulti sono nettamente diversi nell’aspetto dagli stadi immaturi (ninfe). La lunghezza del maschio è da 39 a 45 mm, mentre la femmina è lunga da 42 a 55 mm.

Cavalletta americana adulta, Schistocerca americana (Drury).

Figura 2. Cavalletta americana adulta, Schistocerca americana (Drury). Fotografia di John L. Capinera, Università della Florida.

Uova: La femmina di cavalletta americana deposita le sue uova nel terreno a circa 2-3 cm sotto la superficie spingendo il suo ovopositore verso il basso nel substrato. Le cavallette preferiscono aree con una certa copertura del terreno per depositare i loro grappoli di uova. Il cluster di uova consiste generalmente da 60 a 80 uova che sono fissate insieme da una sostanza schiumosa simile al polimero che la femmina secerne. Le femmine possono deporre fino a tre uova. Le uova sono lunghe da 7 a 8 mm e sono di colore arancione chiaro.

Femmina adulta americana grassshopper (in alto), Schistocerca americana (Drury), ovipositing uova (in basso).

Figura 3. Femmina adulta americana grassshopper (in alto), Schistocerca americana (Drury), ovipositing uova (in basso). Fotografia di John L. Capinera, Università della Florida.

Ninfe: Le ninfe si schiudono tre o quattro settimane dopo che le uova sono depositate e devono farsi strada verso la superficie. Le ninfe passano attraverso cinque o sei instars prima di raggiungere l’età adulta. Inizialmente le ninfe rimangono aggregate in piccoli gruppi, spostandosi di pianta in pianta e nutrendosi gregariamente. Man mano che invecchiano diventano meno aggregati.

Aggregazione di appena nati primi istars di cavalletta americana, Schistocerca americana (Drury), appoggiato su fili d'erba.

Figura 4. Aggregazione di appena nati primi istars di cavalletta americana, Schistocerca americana (Drury), appoggiato su fili d’erba. Fotografia di John L. Capinera, Università della Florida.

Sei instar sono normali, ma se le densità di grasshopper sono basse solo cinque instar saranno completati. Se c’è un’alta densità di ninfe, queste ultime saranno più gialle, arancioni e nere; a basse densità, le ninfe possono essere per lo più verdi.

Confronto di cavalletta americana, Schistocerca americana (Drury), ninfe allevate in condizioni solitarie (insetto verde) e in gruppo (insetto arancione e nero). Durante i periodi di scoppio, le cavallette passano dalla condizione verde a quella arancione e nera.

Figura 5. Confronto tra cavalletta americana, Schistocerca americana (Drury), ninfe allevate in condizioni solitarie (insetto verde) e in gruppo (insetto arancione e nero). Durante i periodi di scoppio, le cavallette passano dalla condizione verde a quella arancione e nera. Fotografia di John L. Capinera, Università della Florida.

Le fasi di sviluppo delle ali (da nessuna ala, a un cuscinetto alare, a cuscinetti alari più sviluppati e infine ali completamente formate) è l’identificatore più semplice per determinare gli instars.

I primi istars sono di colore verde pallido con una striscia mid-dorsale nera che corre per tutta la lunghezza del corpo. Il primo instar è lungo da 6 a 9 mm e ha 13 segmenti antennali. I cuscinetti alari appaiono nel secondo instar e l’aggiunta di altri quattro segmenti antennali; questo instar è solitamente lungo da 12 a 16 mm.

Prima ninfa instar della cavalletta americana, Schistocerca americana (Drury).

Figura 6. Prima ninfa instar della cavalletta americana, Schistocerca americana (Drury). Fotografia di Lyle J. Buss, Università della Florida.

Seconda ninfa instar della cavalletta americana, Schistocerca Americana (Drury).

Figura 7. Seconda ninfa instar della cavalletta americana, Schistocerca Americana (Drury). Fotografia di Lyle J. Buss, Università della Florida.

I terzi instars sono lunghi da 16 a 20 mm, hanno da 21 a 22 segmenti antennali e cuscinetti alari di forma triangolare.

Terza ninfa instar della cavalletta americana, Schistocerca americana (Drury).

Figura 8. Terza ninfa instar della cavalletta americana, Schistocerca americana (Drury). Fotografia di Lyle J. Buss, Università della Florida.

Nel quarto instar, che è lungo da 20 a 26 mm, la venatura delle ali diventa presente nei cuscinetti alari e le antenne hanno da 22 a 24 segmenti.

Quarta ninfa instar della cavalletta americana, Schistocerca americana (Drury).

Figura 9. Quarta ninfa instar della cavalletta americana, Schistocerca americana (Drury). Fotografia di Lyle J. Buss, Università della Florida.

Nel quinto instar l’orientamento dei cuscinetti alari cambia da ventrale a posteriore. Ciò significa che le ali ora puntano orizzontalmente, invece che verticalmente, verso il suolo. Il quinto instar ha una lunghezza da 27 a 35 mm e da 24 a 25 segmenti antennali.

Quinto instar ninfa della cavalletta americana, Schistocerca americana (Drury).

Figura 10. Quinto instar ninfa della cavalletta americana, Schistocerca americana (Drury). Fotografia di Lyle J. Buss, Università della Florida.

Il sesto instar è lungo da 32 a 45 mm e ha da 25 a 26 segmenti antennali. Le ali si estendono indietro per coprire diversi segmenti addominali.

Sesto instar ninfa della cavalletta americana, Schistocerca americana (Drury).

Figura 11. Sesto instar ninfa della cavalletta americana, Schistocerca americana (Drury). Fotografia di Lyle J. Buss, Università della Florida.

Ciclo di vita (Torna su)

La cavalletta americana ha due generazioni all’anno. Sverna nella fase adulta, a differenza della maggior parte delle cavallette, che passano l’inverno nella fase delle uova. Così, cavallette americane sono presenti durante tutto l’anno in Florida. I principali periodi di cova vanno da febbraio a maggio, e ancora da agosto a settembre, ma le generazioni possono sovrapporsi.

Danni (Torna su)

La cavalletta americana può causare lesioni a agrumi, mais, cotone, avena, arachidi, segale, canna da zucchero, tabacco e verdure. Questa specie riceve attenzione in Florida a causa della sua defogliazione di giovani alberi di agrumi. Le piante sono danneggiate dalla cavalletta che rosicchia le foglie e le giovani piante vegetali possono essere mangiate a terra. La maggior parte dei danni all’alimentazione è causata dal terzo, quarto e quinto instars. Questi tre stadi hanno un appetito molto più grande rispetto agli adulti. Oltre alle colture commerciali, la cavalletta americana mostra anche una preferenza per diverse specie di erbe: bahiagrass, bermudagrass, crabgrass, nutgrass e woodsgrass. Si nutre anche di corniolo, hickory e palme.

Danno alimentare a un giovane albero di agrumi causato dalla cavalletta americana, Schistocerca americana (Drury).

Figura 12. Danno alimentare a un giovane albero di agrumi causato dalla cavalletta americana, Schistocerca americana (Drury). Fotografia di John L. Capinera, Università della Florida.

Fronde su palma quasi completamente defogliate dalla cavalletta americana, Schistocerca americana (Drury), durante l'epidemia di cavalletta a Dade City, in Florida.

Figura 13. Fronde sulla palma quasi completamente defogliate dalla cavalletta americana, Schistocerca americana (Drury), durante l’epidemia di cavalletta a Dade City, in Florida. Fotografia di John L. Capinera, Università della Florida.

Defogliazione parziale del fogliame lungo il bordo del campo di mais, nella contea di Gilchrist, FL. I danni da parte della cavalletta americana, Schistocerca americana (Drury), tendono ad essere concentrati lungo i margini del campo, almeno inizialmente.

Figura 14. Defogliazione parziale del fogliame lungo il bordo del campo di mais, nella contea di Gilchrist, FL. I danni da parte della cavalletta americana, Schistocerca americana (Drury), tendono ad essere concentrati lungo i margini del campo, almeno inizialmente. Foto di John L. Capinera, Università della Florida.

Danni significativi alle piante si verificano quando questi insetti diventano molto abbondanti. Abbondanza comunemente un aumento degli alimenti favoriti, erbe tipicamente erbacce. Ciò può derivare dal tempo che favorisce le erbe come inverni miti, aumento delle precipitazioni, soppressione del pascolo da parte del bestiame o lavorazione del terreno. Ad esempio, se i campi non vengono coltivati dopo la raccolta delle colture o le erbe possono crescere lussuosamente nelle giovani piantagioni di pini, si possono sviluppare popolazioni di piante erbacee che favoriscono la sopravvivenza e l’abbondanza delle cavallette. La vegetazione corta o rada consente ai predatori di rilevare e nutrirsi di cavallette, un cibo preferito della vita degli uccelli.

Giovane agrumeto privo di buone pratiche di controllo delle infestanti nella contea di Lake, in Florida. La crescita erbaccia mostrato qui è favorevole alla crescita della popolazione cavalletta. La falciatura aiuterebbe ad alleviare questo problema.

Figura 15. Giovane agrumeto privo di buone pratiche di controllo delle infestanti nella contea di Lake, in Florida. La crescita erbaccia mostrato qui è favorevole alla crescita della popolazione cavalletta. La falciatura aiuterebbe ad alleviare questo problema. Fotografia di John L. Capinera, Università della Florida.

Le cavallette mantengono la temperatura ottimale salendo e scendendo la vegetazione e spostandosi in luoghi più esposti (soleggiati) o meno esposti (ombreggiati). Quando sono abbondanti possono salire su recinzioni schermo intorno piscine, e sui lati delle case. Qui sgranocchiare l’ambiente circostante, e perché i loro apparato boccale (mandibole) sono taglienti, possono fare buchi nella schermatura in fibra di vetro. Questo può essere piuttosto costoso da sostituire. Il più grande livello di danno è causato da ninfe last instar e giovani adulti. Ciò corrisponde al livello generale maggiore di attività di queste fasi.

Schermo della finestra danneggiato da rosicchiare di cavallette americane, Schistocerca americana (Drury).

Figura 16. Schermo della finestra danneggiato da rosicchiare di cavallette americane, Schistocerca americana (Drury). Fotografia di John L. Capinera, Università della Florida.

Gestione (Torna su)

Campionamento. Le densità delle cavallette possono essere stimate utilizzando due metodi. Il primo è quello di selezionare una trama e determinare l’area. L’area può quindi essere percorsa e il numero di cavallette che saltano o volano può essere contato. Questo fornisce una stima del numero per unità di superficie, e quando il numero di ninfe ritardo instar o adulti superano circa 15 per iarda quadrata, v ” è potenziale per danni. Il secondo metodo consiste nel spazzare l’area della trama con una rete di spazzata per determinare il numero medio di cavallette per spazzata. Quest’ultima tecnica è una valutazione relativa che è utile solo per distinguere le aree” alte “da quelle a” bassa ” densità.

Lotta biologica. Gli unici controlli biologici noti per la cavalletta americana influenzano la popolazione su piccola scala. Le larve di mosche (Ditteri: Sarcophagidae e Tachnidae) sono state trovate per parassitare cavallette. Le larve di coleottero della bolla (coleotteri: Meloidae) e di mosca delle api (Ditteri: Bombyliidae), che vivono nel terreno, consumeranno uova di cavalletta.

Anche le cavallette cadono preda di un certo numero di uccelli. Le garzette del bestiame consumano un gran numero e in misura minore anche pettirossi, tordi e corvi. Le garzette bovine sono comunemente viste in associazione con bovini e cavalli, e sono veloci a nutrirsi di cavallette disturbate dall’alimentazione di questi grandi animali.

Un nemico naturale che può essere molto efficace localmente è il fungo Entomophaga grylli. Entomophaga grylli invoca una condizione generale chiamata “malattia del vertice”. Il nome deriva dal fatto che gli individui infetti salgono in una posizione elevata (cima) dove muoiono. Questa posizione elevata aiuta l’agente patogeno a diffondersi perché è più probabile che goccioli o soffi sul fogliame sottostante, dove può essere contattato da individui sani mentre si nutrono di fogliame. Entomophaga grylli non è evidente perché le spore si sviluppano all’interno del corpo della cavalletta. Tuttavia, la cavalletta morta alla fine si disintergraca, permettendo alle spore fungine di essere disperse. La principale evidenza di infezione di E. grylli è il comportamento peculiare delle cavallette morenti e morte: afferrano strettamente la vegetazione con le gambe, anche quando sono morti, e muoiono in una posizione elevata, con la testa rivolta verso l’alto.

Ninfa immatura della cavalletta americana, Schistocerca americana (Drury), uccisa dal fungo Entomophaga grylli.

Figura 17. Ninfa immatura della cavalletta americana, Schistocerca americana (Drury), uccisa dal fungo Entomophaga grylli. Fotografia di John L. Capinera, Università della Florida.

Ninfa immatura della cavalletta americana, Schistocerca americana (Drury), uccisa dal fungo Entomophaga grylli.

Figura 18. Ninfa immatura della cavalletta americana, Schistocerca americana (Drury), uccisa dal fungo Entomophaga grylli. Fotografia di John L. Capinera, Università della Florida.

I funghi Beauveria bassiana e Metarhizium flavoviride sono stati testati per la lotta biologica, ma non sono generalmente disponibili. Nosema locustae è un altro agente patogeno, ed è uno che è disponibile in commercio, ma non ci sono dati che supportano il suo uso per la cavalletta americana o qualsiasi altra cavalletta trovata in Florida, e il suo uso non è raccomandato

Controllo culturale. Le erbacce sono un problema importante, incoraggiando alte popolazioni di cavallette. Disking e aratura sono due buoni modi per distruggere le uova di cavalletta e questo uccide anche piccole ninfe. Negli agrumeti, la coltivazione pulita funge da deterrente alla deposizione delle uova e riduce il numero di ninfe appena nate. Il tempo di coltivazione è molto importante. Se la coltivazione è troppo tardi, le cavallette possono effettivamente essere spinti alle colture per una fonte di cibo. In Florida, le giovani piantagioni di pino in cui non viene praticato il controllo delle infestanti hanno prodotto alti livelli di cavallette. Queste cavallette sono stati conosciuti per influenzare le piante coltivate che sono vicino ai confini delle fattorie di pino. Un programma continuo di soppressione delle infestanti, derivante dalla lavorazione, dall’applicazione di erbicidi o dalla falciatura, può aiutare a evitare questo problema.

Controllo chimico. È meglio applicare insetticida prima che le cavallette siano adulti poiché è più facile uccidere le ninfe. Per raccomandazioni specifiche sull’insetticida, vedere:

Florida Insect Management Guide for citrus
Florida Insect Management Guide for sweet corn

Riferimenti selezionati (Torna all’inizio)

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  • Capinera JL. 1993. Selezione della pianta ospite da parte di Schistocerca americana (Orthoptera: Acrididae). Entomologia ambientale 22: 127-133.
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  • Dakin ME, Hays KL. 1970. Una sinossi di Orthoptera (Sensu Lato) dell’Alabama. Auburn University Agricultural Experiment Station Bulletin 404.
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